Панлейкопения кошек (Feline panleukopenia virus) (ПЦР)

Возбудитель кошачьей панлейкопении (Feline panleukopenia virus, FPV) безоболочечный ДНК содержащий вирус семейства Parvoviridae. Заражению подвержены кошачьи, включая домашних кошек.

1. Подготовка пациента
2. Показания и противопоказания
3. Интерпретация и форма выдачи результата

Известно, что к вирусу чувствительны представители семейств Mustelidae, Procyonidae и Viverridae (включая енотов, лис и норок). Вирус вызывает заболевание, проявляющееся воспалением тонкого отдела кишечника в следствии дегенерации кишечных ворсинок и снижением числа лейкоцитов в периферической крови. Инфекция высоко контагиозна и ассоциируется с высокой заболеваемостью и смертностью. Смертность составляет 25–90% у кошек с острой формой заболевания и до 100% при молниеносном течении инфекции.

Вирус распространен повсеместно. Передается фекальным и оральным путями при контакте с инфицированными биологическими жидкостями (фекалии). Доказаны случаи заражения при проглатывании блох. Возможно заражение домашних животных через руки, обувь и одежду владельцев. Патоген высокоустойчив в окружающей среде и сохраняет свою жизнеспособность в зараженном органическом материале до 1 года.

Через 18-24 ч после интраназального или орального инфицирования вирус реплицируется в клетках слизистой ротоглотки с последующей виремией в ткани органов (2–7 дней). FPV тропен к митотически активным тканям костного мозга, слизистой оболочки кишечника, лимфатической системы. Внутриутробное заражение на ранних сроках беременности приводит к гибели плодов (резорбция, аборт, мумифицирование). Заражение на поздних сроках беременности вызывает повреждение центральной нервной системы. В помете встречаются здоровые котята, которые могут служить источниками вируса на протяжении 2 месяцев после появления на свет.

В качестве инструментов скринингового исследования на наличие парвовируса в фекалиях актуально использование иммуноферментного анализа (ELISA) и иммунохроматографии (ИХА). Важно помнить, что на протяжении трех недель после введения модифицированной живой вакцины можно получить ложноположительный результат у животных, подвергнутых вакцинации.

Использование ПЦР показано для исследования фекалий, крови или инфицированных тканей. Забор крови проводится у кошек без выраженной диареи, либо при невозможности получения фекальных масс.

Если тест на выявление антигенов вируса в фекалиях положительный (животное не прививалось за предшествующие 3 недели), парвовирусную инфекцию можно считать подтвержденной. Если тест на наличие антигенов отрицательный, у животного выражены симптомы панлейкопении, необходимо проведение анализа с использованием ПЦР, направленной на выявление вирусной ДНК в кале или крови.

Исследуемый аналит: эпителий слизистой оболочки прямой кишки.

Подготовка пациента: не рекомендуется взятие соскобов после применения средств, облегчающих ведение термометра ; не рекомендуется взятие соскоба, если животное получает сорбенты.

Показания: рвота, диарея, угнетение, гипертермия, анорексия.

Противопоказания: не известны.

Метод отбора биоматериала: соскоб эпителиальных клеток со слизистой оболочки прямой кишки.

Интерпретация результата: результаты исследования содержат информацию исключительно для врачей. Диагноз ставится на основании комплексной оценки различных показателей, дополнительных сведений и зависит от методов диагностики.

Форма выдачи результата: качественный метод.

Обнаружение или не обнаружение в исследуемой пробе ДНК Feline panleukopenia virus, FPV.

Использованная литература:

1. Barker, I.K., Povey, R.C., Voigt, D.R., 1983. Response ofmink, skunk, red fox and raccoon to inoculation with mink virus enteritis, feline panleukopenia and canine parvovirus and prevalence of antibody to parvovirus in wild carnivores in Ontario. Canadian Journal of Comparative Medicine 47, 188–197.
2. Scott, F.W., Geissinger, C.M., 1999. Long-term immunity in cats vaccinated with an inactivated trivalent vaccine. American Journal of Veterinary Research 60, 652–658.
3. Steinel, A., Parrish, C.R., Bloom, M.E., Truyen, U., 2001. Parvovirus infections in wild carnivores. Journal of Wildlife Diseases 37, 594–607.
4. Poole, G.M., 1972. Stability of a modified, live panleucopenia virus stored in liquid phase. Applied Microbiology 24, 663–664.
5. Neuerer, F.F., Horlacher, K., Truyen, U., Hartmann, K., 2008. Comparison of different in-house test systems to detect parvovirus in faeces of cats. Journal of Feline Medicine and Surgery 10, 247–251.